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神经干细胞

神经干细胞的培养

一、神经干细胞的分离和传代
无菌条件下取新生SD大鼠(出生48h内)脑组织,D-Hanks液充分漂洗后,在解剖显微镜下剥离脑膜,准确分离海马,用眼科剪将海马剪碎后,再转移到DMEM/F12(1:1)加B27 和bFGF(20ng/ml)的无血清培养基,吸管吹打机械分离制作单细胞悬液,台盼蓝染色后细胞计数,调整细胞浓度为5×104~5个/ml,置于24孔培养板中培养,每孔加入细胞悬液500μl。待神经球形成后再次机械分离克隆制作单细胞悬液,仍以5×104个/ml的细胞浓度置于24孔培养板中培养,每孔加入细胞悬液500μl。此后每7d机械分离克隆传代1次,方法同前。
 
二、BrdU标记
将BrdU溶于无血清培养基,过滤除菌后加入神经球形成后再次机械分离克隆制作的单细胞悬液中(BrdU终浓度为5μmol/L),培养7d待新的神经球形成后,将神经球转移到预先涂布有多聚赖氨酸的培养板中,贴壁2h行BrdU免疫细胞化学染色。
 
三、神经干细胞的诱导分化
选取部分上述传代后形成的次代神经球种植于预先涂布有多聚赖氨酸的24孔培养板中,并加入有血清培养基(含10%胎牛血清的DMEM/F12),一部分神经球于贴壁2h后行Nestin免疫细胞化学染色,另一部分神经球继续培养,观察其生长分化情况。另将一部分次代神经球机械分离制成单细胞悬液后加入有血清培养基贴壁培养,7d后分别行Tuj1 、GFAP 、Galc 免疫细胞化学染色。
 
四、条件培养液的制备
取1g鸡胚的后肢骨骼肌组织,加入9mlD-Hanks液中冰浴匀浆15min,离心获得上清液,过滤除菌后,加两倍体积DMEM/F12培养基制成条件培养液备用。
 
五、神经干细胞的定向诱导分化
将一部分次代神经球机械分离制成单细胞悬液后分别加入条件培养液和有血清培养基(含10%胎牛血清的DMEM/F12)中对照贴壁培养,7d后均行ChAT免疫细胞化学染色。
 
六、免疫细胞化学染色
培养细胞用4%多聚甲醛固定30min后,PBS充分漂洗,然后按ABC法分别行鼠抗Nestin,鼠抗Tuj1,兔抗GFAP,鼠抗Galc,鼠抗Brdu免疫细胞化学染色,用DAB和H2O2作为呈色剂,阳性着色为棕黄色。具体方法为:
(1) 0.05M PBS漂洗 10min×3次
(2) 0.3%H2O2/0.05M PBS室温 30min
(3) 0.3%Triton-100/0.05M PBS 37 ℃,15min
(4) 0.05M PBS漂洗 10min×3次
(5) 5%羊血清/0.05M PBS 37 ℃,15min
(6) I抗(2%羊血清/0.05M PBS配) 4℃,48h
(7) 0.05M PBS漂洗 10min×3次
(8) II抗(2%羊血清/0.05M PBS配,1:200) 37 ℃,1.5h
(9) 0.05M PBS漂洗 10min×3次
(10) AB复合物(0.05M PBS配,1:100) 37 ℃,1.5h
(11) 0.05M PBS漂洗 10min×3次
(12) Tris-HCl缓冲液 37 ℃,15min
(13) DAB显色 20min
(14) 蒸馏水漂洗 10min×3次
 
然后,为进一步证明实验组的细胞是胆碱能神经元,将已作完ChAT免疫细胞化学染色的细胞用PBS终止显色以及进一步封闭非特异性结合位点后, 仍用ABC法行Tuj1免疫细胞化学染色,用含有NiCl的DAB和H2O2作为呈色剂,双标阳性细胞着色为蓝黑色。